## convert old xgboots pickle format ```bash cd Data/mole/pretrained_model/model_ginconcat_btwin_100k_d8000_l0.0001 ipython ``` ```python import xgboost as xgb import pickle from pathlib import Path ckpt = Path('MolE-XGBoost-08.03.2024_14.20.pkl') out_ckpt = Path('./') # 加载旧模型 with open(ckpt, 'rb') as f: model = pickle.load(f) # 用新格式保存(推荐) model.get_booster().save_model(out_ckpt.joinpath('MolE-XGBoost-08.03.2025_10.17.json')) # 或者继续用pickle但清晰格式 booster = model.get_booster() booster.feature_names = None with open(out_ckpt.joinpath('MolE-XGBoost-08.03.2025_10.17.pkl'), 'wb') as f: pickle.dump(model, f) ``` ## 完整预测流程 ```mermaid SMILES 分子(输入CSV文件) ↓ [MolE 模型] ├── config.yaml(模型配置) └── model.pth(模型权重) ↓ 分子特征表示(1000维向量) ↓ 构建"分子-菌株对"(笛卡尔积) └── maier_screening_results.tsv.gz(菌株列表) ↓ [XGBoost 模型] └── MolE-XGBoost-08.03.2025_10.17.json(或.pkl) ↓ 对每一对预测:是否抑制生长 ↓ 获得原始预测结果(对每个菌株的预测) ↓ [聚合分析] ├── maier_screening_results.tsv.gz(菌株列表) └── strain_info_SF2.xlsx(革兰染色信息) ↓ 最终预测结果 ↓ 输出CSV文件 ``` ## 所需文件清单 | 步骤 | 文件名 | 用途 | 备注 | |------|--------|------|------| | **MolE 模型** | `config.yaml` | 定义MolE网络结构 | YAML配置文件 | | | `model.pth` | MolE模型权重 | PyTorch格式 | | **构建菌株对** | `maier_screening_results.tsv.gz` | 提供40个菌株列表 | 压缩的TSV文件 | | **XGBoost 预测** | `MolE-XGBoost-08.03.2025_10.17.json` | 预测分子-菌株对 | JSON格式(新)或PKL格式(旧) | | **聚合分析** | `maier_screening_results.tsv.gz` | 菌株名称和统计 | 复用(与构建菌株对同一文件) | | | `strain_info_SF2.xlsx` | 革兰染色分类信息 | Excel格式 | ## 文件存放位置 所有文件应位于: ``` Data/mole/pretrained_model/model_ginconcat_btwin_100k_d8000_l0.0001/ ├── config.yaml ├── model.pth ├── MolE-XGBoost-08.03.2025_10.17.json ├── maier_screening_results.tsv.gz └── strain_info_SF2.xlsx ``` ## 代码中的对应关系 ```python # PredictionConfig 中的配置 @dataclass class PredictionConfig: xgboost_model_path = "MolE-XGBoost-08.03.2025_10.17.json" mole_model_path = "model_ginconcat_btwin_100k_d8000_l0.0001" # 目录(包含config.yaml + model.pth) strain_categories_path = "maier_screening_results.tsv.gz" gram_info_path = "strain_info_SF2.xlsx" ``` ## 数据流向总结 1. **输入**:CSV文件中的SMILES分子 2. **MolE处理**:分子 → 1000维特征向量 3. **菌株配对**:1个分子 × 40个菌株 = 40对 4. **XGBoost预测**:每对 → 抑制概率 5. **聚合分析**:统计和分类(按革兰染色) 6. **输出**:CSV文件中的预测结果(包含8个指标) ## 参考文件 1. `maier_screening_results.tsv.gz` - 菌株列表和筛选数据 ```python self.maier_screen = pd.read_csv( self.config.strain_categories_path, sep='\t', index_col=0 ) self.strain_ohe = self._prep_ohe(self.maier_screen.columns) # 独热编码 ``` 包含所有已知菌株的名称(40个菌株) 用于与每个分子做笛卡尔积(分子×菌株),生成所有"分子-菌株对" XGBoost为每一对预测:是否能抑制该菌株的生长 2. `strain_info_SF2.xlsx` - 革兰染色信息 ```python self.maier_strains = pd.read_excel(self.config.gram_info_path, ...) gram_dict = self.maier_strains[["Gram stain"]].to_dict()["Gram stain"] ``` 记录每个菌株的革兰染色属性:阳性(positive) 或 阴性(negative) 用于将预测结果按革兰染色分类统计 预测结果示例: 某分子 mol1 的预测结果会包括: ```python BroadSpectrumResult( chem_id='mol1', apscore_total=2.5, # 对所有菌株的抗菌分数 apscore_gnegative=2.1, # 仅对革兰阴性菌的分数 apscore_gpositive=2.8, # 仅对革兰阳性菌的分数 ginhib_total=25, # 抑制的菌株总数 ginhib_gnegative=12, # 抑制的革兰阴性菌数 ginhib_gpositive=13, # 抑制的革兰阳性菌数 broad_spectrum=1 # 是否广谱(≥10个菌株) ) ``` 结果解读: ## BroadSpectrumResult 字段说明表 | 字段名 | 数据类型 | 计算方法 | 含义说明 | |--------|----------|----------|---------| | `chem_id` | 字符串 | 输入的化合物标识符 | 化合物的唯一标识,如 "mol1"、"compound_001" 等 | | `apscore_total` | 浮点数 | `log(gmean(所有40个菌株的预测概率))` | 总体抗菌潜力分数:所有菌株预测概率的几何平均数的对数。值越高表示抗菌活性越强;负值表示整体抑制概率较低 | | `apscore_gnegative` | 浮点数 | `log(gmean(革兰阴性菌株的预测概率))` | 革兰阴性菌抗菌潜力分数:仅针对革兰阴性菌株计算的抗菌分数。用于判断对阴性菌的特异性 | | `apscore_gpositive` | 浮点数 | `log(gmean(革兰阳性菌株的预测概率))` | 革兰阳性菌抗菌潜力分数:仅针对革兰阳性菌株计算的抗菌分数。用于判断对阳性菌的特异性 | | `ginhib_total` | 整数 | `sum(所有菌株的二值化预测)` | 总抑制菌株数:预测被抑制的菌株总数(概率 ≥ 0.04374 的菌株数量)。范围 0-40 | | `ginhib_gnegative` | 整数 | `sum(革兰阴性菌株的二值化预测)` | 革兰阴性菌抑制数:预测被抑制的革兰阴性菌株数量。范围 0-20 | | `ginhib_gpositive` | 整数 | `sum(革兰阳性菌株的二值化预测)` | 革兰阳性菌抑制数:预测被抑制的革兰阳性菌株数量。范围 0-20 | | `broad_spectrum` | 整数 (0/1) | `1 if ginhib_total >= 10 else 0` | 广谱抗菌标志:如果抑制菌株数 ≥ 10,判定为广谱抗菌药物(1),否则为窄谱(0) | 说明 - **apscore_* 类字段**:基于预测概率的连续评分,反映抗菌活性强度 - **ginhib_* 类字段**:基于二值化预测的离散计数,反映抑制范围 - **broad_spectrum**:基于 ginhib_total 的布尔判定,快速标识广谱特性